Welche neuen therapeutischen Möglichkeiten ergeben sich, wenn der Prozess des Aufbaus von Herpesviren bekannt ist?

Worum geht es in diesem Forschungsprojekt?

HSV1 (rot) in Nervenzellen (Tubulin in blau)

Worum geht es in diesem Forschungsprojekt?

Gesunde Menschen mit einem funktionierenden Immunsystem können Herpesviren in der Regel in Schach halten, während bei sehr jungen und älteren Personen sowie bei Patienten mit erhöhter Anfälligkeit – entweder aufgrund genetischer Faktoren oder in Folge einer Immunsuppression (z. B. nach Organtransplantation oder bei Patienten, die mit HIV / AIDS leben) primäre oder wiederkehrende Herpesvirus-Infektionen schwere Krankheiten auslösen können. Da Herpesviren weltweit verbreitet sind, ist die von ihnen verursachte Krankheitslast sowohl in Industrie- als auch in Entwicklungsländern hoch. Krankheiten reichen von stigmatisierenden Hautläsionen über unerträgliche Schmerzen bis hin zu lebensbedrohlicher Encephalitis und Krebs. Insbesondere das humane Cytomegalievirus (HCMV), die Herpes-Simplex-Viren (HSV-1 und HSV-2), das Varicella-Zoster-Virus (VZV) und das Kaposi Sarkom-assoziierte Herpesvirus (KSHV) sind für die schwerwiegendsten, teilweise lebensbedrohlichen Komplikationen verantwortlich.

Wie ist der Stand der Dinge?

Zur Behandlung von Herpesvirus-Infektionen sind nur Medikamente zugelassen. Diese zielen hauptsächlich auf eine Replikationshemmung der viralen DNA-Genome ab und haben teilweise erhebliche Nebenwirkungen. Bei längerer Anwendung treten zudem resistente Virusstämme auf. Das kürzlich zugelassene Letermovir, welches das Terminase-Enzym von HCMV hemmt, erweitert zum ersten Mal das Spektrum an viralen Zielstrukturen für antivirale Medikamente. Es wurden jedoch bereits erste resistente HCMV-Mutanten beschrieben, weshalb die Möglichkeit von Kombinationstherapien, die gegen HIV und HCV überaus erfolgreich sind, auch für Herpesviren wünschenswert ist. Deshalb haben wir uns zum Ziel gesetzt, Protein-Protein-Interaktion zu identifizieren und zu charakterisieren, die für die Assemblierung infektiöser Virus-Partikel essentiell sind und daher als neuartige Ansatzpunkte für Medikamente dienen können. Diese Strategie wird den Weg für Kombinationstherapien mit reduzierter Nebenwirkung und einem viel geringeren Risiko für das Auftreten von arzneimittelresistenten Viren bei behandelten Patienten ebnen.

Was sind die Projektziele?

Das Hauptziel dieses Projekts ist die Charakterisierung von molekularen Mechanismen und von Protein-Protein-Interaktionen, die für die Herpesvirus-Assemblierung von entscheidender Bedeutung sind. Dies ist ein komplexer und stark regulierter Prozess, der das Zusammensetzen von Kapsiden und das Verpacken von Genomen im Zellkern, den Austritt aus dem Kern, die Tegumentierung im Zytoplasma und die Kapsidumhüllung an zytoplasmatischen Organellen umfasst. Jeder dieser Schritte beruht auf essentiellen, hochkonservierten Protein-Protein-Wechselwirkungen. Herpesvirus-Kapside werden im Zellkern gebildet, gefolgt von der Genomverpackung, die durch einen viralen Proteinkomplex (der „Terminase“) vermittelt wird. Schließlich verlassen die reifen Kapside den Zellkern unter Nutzung eines spezifischen viralen Proteinkomplex, der „Nuclear Egress Complex“ genannt wird. Interaktionen von Proteinen des inneren Teguments mit der Mikrotubuli-Transportmaschinerie der Wirtszelle erleichtern den Kapsidtransport zum Ort der endgültigen Verpackung in eine Lipidhülle. Wir werden unsere vielfältige Expertise in Herpesvirus-Zellbiologie, Proteinfunktionen und –strukturaufklärung nutzen, um entscheidende Protein-Protein-Interaktionen und deren Interaktionsflächen zu bestimmen, um damit Angriffspunkte für neue Medikamente gegen Herpesviren zu definieren.

Wie kommen wir da hin?

Wir werden uns auf die Aufklärung der molekularen Prinzipien konzentrieren, die der Herpesvirus-Assemblierung zugrunde liegen, sowie auf die Funktion von dabei beteiligten, evolutionär konservierten Proteinkomplexen, und dazu auf unser breites Fachwissen und unsere Expertise mit unterschiedlichen Techniken zurückgreifen (für bestimmte Aspekte in Zusammenarbeit mit Thomas Schulz und Abel Viejo Borbolla). Zusammen verfügen wir über fundierte Erfahrungen mit ausgefeilten Expressionsstrategien für rekombinante Proteine, modernster Strukturbiologie (einschließlich Röntgenkristallographie, Kryo-Elektronenmikroskopie und Elektronenkryotomographie), Proteinbiochemie (z. B. markierungsfreie Interaktionsanalyse, Co-Immunpräzipitation, in-vitro-Kapsid-Assemblierung und -tegumentierung), Herpesvirusgenetik (BAC-Mutagenese), Immunelektronenmikroskopie von infizierten Zellen und Gewebe, und Bildgebung von lebenden Zellen unter Verwendung von Viren mit fluoreszenzmarkierten Kapsiden und Tegument. Mit unserer umfassenden Expertise werden wir sowohl evolutionär konservierte Mechanismen als auch Schritte bei der Partikel-Assemblierung analysieren, die sich zwischen den einzelnen Herpesviren unterscheiden.

Leitung des Projekts D2

Projekttitel: Herpesvirus-Assemblierung

Prof. Dr. Kay Grünewald

Projekte: D1, D2

Prof. Dr. Thomas Krey

Projekte: B10, D1

Prof. Dr. Martin Messerle

Projekte: D1, D2

Prof. Dr. Beate Sodeik

Projekte: A4, D1, D2

Publikationen des Projektes D2

Publikationen des Jahres 2022

The interferon-inducible GTPase MxB promotes capsid disassembly and genome release of herpesviruses eLife. Manutea C Serrero, Virginie Girault, Sebastian Weigang, Todd M Greco, Ana Ramos Nascimento, Fenja Anderson, Antonio Piras, Ana Hickford Martinez, Jonny Hertzog, Anne Binz, Anja Pohlmann, Ute Prank, Jan Rehwinkel, Rudolf Bauerfeind, Ileana M Cristea, Andreas Pichlmair, Georg Kochs, Beate Sodeik (2022) eLife

Publikationen des Jahres 2021

Assembly of infectious Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus progeny requires formation of a pORF19 pentamer. Naniima P, Naimo E, Koch S, Curth U, Alkharsah KR, Ströh LJ, Binz A, Beneke JM, Vollmer B, Böning H, Borst EM, Desai P, Bohne J, Messerle M, Bauerfeind R, Legrand P, Sodeik B, Schulz TF, Krey T. PLoS Biol. 2021 Nov 4;19(11):e3001423.

Infection-induced chromatin modifications facilitate translocation of herpes simplex virus capsids to the inner nuclear membrane. Aho V, Salminen S, Mattola S, Gupta A, Flomm F, Sodeik B, Bosse JB, Vihinen-Ranta M.PLoS Pathog. 2021 Dec 15;17(12):e1010132.

Concatemeric Broccoli reduces mRNA stability and induces aggregates. Rink MR, Baptista MAP, Flomm FJ, Hennig T, Whisnant AW, Wolf N, Seibel J, Dölken L, Bosse JB. PLoS One. 2021 Aug 4;16(8):e0244166.

Publikationen des Jahres 2020

The prefusion structure of herpes simplex virus glycoprotein B. Vollmer B, Pražák V, Vasishtan D, Jefferys EE, Hernandez-Duran A, Vallbracht M, Klupp BG, Mettenleiter TC, Backovic M, Rey FA, Topf M, Grünewald K.  Sci Adv. 2020 Sep 25;6(39):eabc1726

Publikationen des Jahres 2019

Quantitative Microscopy Reveals Stepwise Alteration of Chromatin Structure during Herpesvirus Infection. Aho V, Mäntylä E, Ekman A, Hakanen S, Mattola S, Chen JH, Weinhardt V, Ruokolainen V, Sodeik B, Larabell C, Vihinen-Ranta M. Viruses. 2019 Oct 11;11(10):935. doi: 10.3390/v11100935. PMID: 31614678; PMCID: PMC6832731.

A molecular pore spans the double membrane of the coronavirus replication organelle. Wolff G, Limpens RWAL, Zevenhoven-Dobbe JC, Laugks U, Zheng S, de Jong AWM, Koning RI, Agard DA, Grünewald K, Koster AJ, Snijder EJ, Bárcena M. Science. 2020 Sep 11;369(6509):1395-1398.

Publikationen des Projektes D2